Course Syllabus
Obiettivi
Il corso si propone di
fornire allo studente le conoscenze più attuali nel campo della immunometria e
dell’enzimologia clinica, e di migliorarne la comprensione attraverso
esercitazioni pratiche mirate.
Contenuti sintetici
L’enzimologia e l’immunometria sono alla base della
maggior parte dei tests di laboratorio. Per tale motivo, verranno fornite
nozioni sull’utilizzo degli enzimi e degli anticorpi nelle tecniche più
avanzate per la diagnostica e la
ricerca.
Programma esteso
Approcci metodologici in biochimica clinica e biologia molecolare clinica. Dosaggi basati su: enzimi, immunometria, pcr; rilevazione e amplificazione del segnale: vantaggi e svantaggi dei differenti format analitici; elettroforesi mono e bi-dimensionale; western blotting; “protein array”.
Esercitazione pratica in laboratorio:
1 – ricerca di proteine specifiche in campioni biologici mediante anticorpi: separazione di proteine provenienti da campioni biologici mediante elettroforesi su gel di poliacrilamide (SDS-PAGE), trasferimento delle proteine dal gel ad un filtro (Western Blotting), immunodecorazione con anticorpi specifici per l’identificazione e la quantificazione di proteine di interesse, rilevamento del segnale proveniente dalla proteina di interesse tramite saggio in chemiluminescenza, acquisizione dell’immagine con CCD camera;
2 - uso di enzimi in diagnostica: funzionamento dello spettrofotometro per studiare lo spettro di assorbimento di sostanze attive otticamente (NAD+ e NADH/H+); misurazione della concentrazione di una sostanza attiva otticamente (NADH/H+) mediante la legge di Lambert&Beer e il coefficiente di estinzione molare; dosaggio della concentrazione dell’enzima Lattico deidrogenasi in campioni di siero, in cinetica, osservando la variazione nel tempo del NADH/H+. Dosaggio del substrato mediante enzimi: dosaggio del glucosio con il metodo colorimetrico della Glucosio Ossidasi accoppiata alla Perossidasi di rafano: lettura del saggio allo spettrofotometro.
Prerequisiti
Iscrizione al terzo anno del Corso di Laurea in
Tecniche di Laboratorio Biomedico
Modalità didattica
Nel periodo di emergenza Covid-19 le lezioni si svolgeranno in modalità mista:
- lezioni videoregistrate sincrone
- esercitazioni in laboratorio a piccoli gruppi
Materiale didattico
Materiale e riferimenti
bibliografici forniti dal docente
Periodo di erogazione dell'insegnamento
Primo semestre
Orario di ricevimento
su appuntamento richiesto per mail
Aims
The course is aimed not
only at acquisition of recent knowledge in the field of immunometry and
clinical enzimology, but also at experience of these techniques directly by a
focused laboratory training.
Contents
Enzimology and
immunometry are the base of most laboratory tests. For this reason, the course
will show the principles of innovative enzymatic- and immuno-assays in
diagnostics and research.
Detailed program
Methodological approaches to clinical biochemistry. Enzime-, immunometry-, and pcr-based assays; signal detection and amplification; different analytical formats; advantages and disadvantages; 1d and 2d electrophoresis; western blotting; protein arrays.
Practical training in laboratory:
1 - study of specific proteins in biological samples by antibodies: separation of proteins from biological samples by polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), transfer of proteins from gel to filter (Western Blotting), immunodecoration with specific antibodies for identification and quantification of proteins of interest, detection of the signal coming from the protein of interest by chemiluminescence assay, image acquisition by a CCD camera;
2 - use of enzymes in diagnostics: use of the spectrophotometer to study the absorption spectrum of optically active substances (NAD+ and NADH/H+); measurement of the concentration of an optically active substance (NADH/H+) by Lambert&Beer law and the molar extinction coefficient; measurement of the concentration of lactic dehydrogenase enzyme in serum samples, evaluating the variation of NADH/H+ concentration in time (kinetic mode). Enzymatic measurement of a substrate: glucose assay by colorimetric method (Glucose Oxidase Horseradish Peroxidase) using the spectrophotometer.
Prerequisites
3rd year of the Course in Biomedical Laboratory Techniques
Teaching form
In the Covid-19 emergency period the lessons will be performed in mixed modality:
- video recorded synchronous lessons
- laboratory training organized for groups of a few students
Textbook and teaching resource
Material
and bibliographic references supplied by the professor
Semester
First semester
Assessment method
Attendance
Office hours
On appointment requested by mail