Course Syllabus
Obiettivi
Lo studente deve acquisire una conoscenza generale delle principali metodiche di laboratorio, con particolare riferimento alle tecniche per l’analisi di acidi nucleici e di proteine, le colture cellulari, le metodiche di PCR e citofluorimetria, l’analisi istologica.
Scopo del corso è fornire allo studente le competenze necessarie per comprendere in autonomia la parte sperimentale di un articolo scientifico di ricerca di base inerente le metodiche trattate.
Contenuti sintetici
Il Tirocinio fornisce allo studente una formazione di base sulle principali metodiche cellulari, molecolari e istologiche utilizzate in un laboratorio di ricerca.
Il corso consisterà in una serie di lezioni monografiche teoriche, anche con l'ausilio d risorse video e multimediali. Tali lezioni saranno seguite da sessioni di laboratorio nelle quali lo studente avrà la possibilità di mettere in pratica alcune metodiche di base tra quelle affrontate.
In caso di prolungamento dell'emergenza COVID-19, le lezioni teoriche verranno erogate in teledidattica mediante lezioni erogate online in modalità sincrona e registrate per essere poi messe a disposizione degli studenti. Laddove possibile la parte pratica verrà svolta in presenza
Programma esteso
- colture cellulari: cosa sono, principali tipologie e applicazioni con un particolare focus sulle cellule staminali e sull'ingegneria tissutale
- analisi di proteine: estrazione e metodiche di separazione elettroforetica e immunoblotting
- analisi di acidi nucleici: estrazione e metodiche di separazione elettroforetica e saggi di ibridazione
- metodiche di PCR
- citofluorimetria: principi e applicazioni
- istologia: processamento del tessuto, colorazioni istologiche e immunoistochimica. Tecniche di microscopia
Prerequisiti
Superamento degli esami nelle discipline pertinenti ai tirocinio.
Modalità didattica
Lezioni sulla teoria alla base delle diverse tecniche di laboratorio ed esercitazioni pratiche in laboratorio.
In caso di prolungamento dell'emergenza COVID-19, le lezioni teoriche verranno erogate in teledidattica mediante lezioni registrate. Laddove possibile la parte pratica verrà svolta in presenza
Materiale didattico
Agli studenti verranno fornite copie delle presentazioni delle lezioni tenute dai docenti sule diverse metodiche di laboratorio.
Periodo di erogazione dell'insegnamento
Secondo semestre del secondo anno.
Modalità di verifica del profitto e valutazione
Per accedere alla prova finale gli studenti dovranno aver frequentato almeno il 70% delle ore di tirocinio.
La verifica del profitto verrà effettuata tramite test svolti sia durante le lezioni teoriche sia durante le lezioni pratiche, volti a verificare la conoscenza delle basi teoriche e la comprensione delle metodologie di ricerca presentate. Una prova finale consistente in domande a risposta multipla e/o vero-falso sugli argomenti affrontati nel corso del tirocinio e su un colloquio inerente l'esperienza pratica di laboratorio completerà la valutazione.
La valutazione finale consisterà in idoneo/non idoneo.
Orario di ricevimento
Lunedì-venerdì, su appuntamento
Aims
Students will accomplish a general knowledge of the main laboratory techniques, in particular nucleic acid and protein analysis, cell culture, PCR, flow cytometry and histological analysis.
As a final goal, the students will be able to read and understand the experimental procedures described in a paper on basic research related to the topics of the course.
Contents
The Internship provides the student with basic training on the main cellular. molecular and histological techniques applied in a research laboratory
The course will consist of a series of frontal lessons, with video and multimedial contents. followed by laboratory sessions in which the student will have the opportunity to practice some basic methods among those addressed.
In case of COVID-19 emergency extension,, the frontal lessons will be delivered through online lessons, recorded and made available to students. If possible, the practical part will be carried out in presence
Detailed program
- cell cultures: principles, main types and applications with a particular focus on stem cells and tissue engineering
- protein analysis: extraction and electrophoresis and immunoblotting methods
- nucleic acid analysis: extraction and electrophoresis and hybridization assays
- PCR methods
- flow cytometry: principles and applications
- histology: tissue processing, histological staining and immunohistochemistry. Microscopy techniques
Prerequisites
Passing exams in the disciplines relevant to internship.
Teaching form
Lectures on the principles of the different techniques and laboratory training.
In case of COVID-19 emergency extension,, the frontal lessons will be delivered through online lessons. If possible, the practical part will be carried out in presence
Textbook and teaching resource
The teachers will provide slides of the lectures.
Semester
Second semester of the second year.
Assessment method
Students must take part at least at 70% of the course.
The verification of the profit will be carried out through tests carried out both during the theoretical lessons and during the practical lessons, aimed at verifying the knowledge of the theoretical bases and the understanding of the research methodologies presented. A final test consisting of multiple choice and / or true-false questions on the topics addressed during the internship and an interview concerning the practical laboratory experience will complete the assessment.
Final evaluation will be approved/not approved
Office hours
Monday to Friday, by appointment