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Percorso della pagina
  1. Medicine and Surgery
  2. Single Cycle Master Degree (6 years)
  3. Odontoiatria e Protesi Dentaria [H4602D - H4601D]
  4. Courses
  5. A.A. 2020-2021
  6. 2nd year
  1. Dental Internship 1
  2. Summary
Insegnamento Course full name
Dental Internship 1
Course ID number
2021-2-H4601D029
Course summary SYLLABUS

Course Syllabus

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Obiettivi

Lo studente deve acquisire una conoscenza generale delle principali metodiche di laboratorio, con particolare riferimento alle tecniche per l’analisi di acidi nucleici e di proteine, le colture cellulari, le metodiche di PCR e citofluorimetria, l’analisi istologica. 

Scopo del corso è fornire allo studente le competenze necessarie per comprendere in autonomia la parte sperimentale di un articolo scientifico di ricerca di base inerente le metodiche trattate.

Contenuti sintetici

Il Tirocinio fornisce allo studente una formazione di base sulle principali metodiche cellulari, molecolari e istologiche utilizzate in un laboratorio di ricerca.

Il corso consisterà in una serie di lezioni monografiche teoriche, seguite da sessioni di laboratorio nelle quali lo studente avrà la possibilità di mettere in pratica alcune metodiche di base tra quelle affrontate.

In caso di prolungamento dell'emergenza COVID-19, le lezioni teoriche verranno erogate in teledidattica mediante lezioni registrate. Laddove possibile la parte pratica verrà svolta in presenza

Programma esteso

  • colture cellulari: cosa sono, principali tipologie e applicazioni con un particolare focus sulle cellule staminali e sull'ingegneria tissutale
  • analisi di proteine: estrazione e metodiche di separazione elettroforetica e immunoblotting 
  • analisi di acidi nucleici: estrazione e metodiche di separazione elettroforetica e saggi di ibridazione
  • metodiche di PCR 
  • citofluorimetria: principi e applicazioni
  • istologia: processamento del tessuto, colorazioni istologiche e immunoistochimica. Tecniche di microscopia
Lo studente avrà la possibilità di mettere in pratica alcune metodiche di base tra quelle affrontate.

Prerequisiti

Superamento degli esami nelle discipline pertinenti ai tirocinio.

Modalità didattica

Lezioni sulla teoria alla base delle diverse tecniche di laboratorio ed esercitazioni pratiche in laboratorio.


In caso di prolungamento dell'emergenza COVID-19, le lezioni teoriche verranno erogate in teledidattica mediante lezioni registrate. Laddove possibile la parte pratica verrà svolta in presenza

Materiale didattico

Agli studenti verranno fornite copie delle presentazioni delle lezioni tenute dai docenti sule diverse metodiche di laboratorio.

Periodo di erogazione dell'insegnamento

Secondo semestre del secondo anno.

Modalità di verifica del profitto e valutazione

Per accedere alla prova finale gli studenti dovranno aver frequentato almeno il 70% delle ore di tirocinio.

La prova finale consisterà in domande a risposta multipla e/o vero-falso sugli argomenti affrontati nel corso del tirocinio e su un colloquio inerente l'esperienza pratica di laboratorio.

La valutazione finale consisterà in idoneo/non idoneo.

Orario di ricevimento

Lunedì-venerdì, su appuntamento

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Aims

Students will accomplish a general knowledge of the main laboratory techniques, in particular nucleic acid and protein analysis, cell culture, PCR, flow cytometry and histological analysis. 

As a final goal, the students will be able to read and understand the experimental procedures described in a paper on basic research related to the topics of the course.

Contents

The Internship provides the student with basic training on the main cellular. molecular and histological techniques applied in a research laboratory

The course will consist of a series of frontal lessons, followed by laboratory sessions in which the student will have the opportunity to practice some basic methods among those addressed.

In case of COVID-19 emergency extension,, the frontal lessons will be delivered through recorded lessons. If possible, the practical part will be carried out in presence

Detailed program

  • cell cultures: principles, main types and applications with a particular focus on stem cells and tissue engineering
  • protein analysis: extraction and electrophoresis and immunoblotting methods
  • nucleic acid analysis: extraction and electrophoresis and hybridization assays
  • PCR methods
  • flow cytometry: principles and applications
  • histology: tissue processing, histological staining and immunohistochemistry. Microscopy techniques
The student will have the opportunity to practice some basic techniques among those addressed

Prerequisites

Passing exams in the disciplines relevant to internship.

Teaching form

Lectures on the principles of the different techniques and laboratory training.


In case of COVID-19 emergency extension,, the frontal lessons will be delivered through recorded lessons. If possible, the practical part will be carried out in presence

Textbook and teaching resource

The teachers will provide slides of the lectures.

Semester

Second semester of the second year.

Assessment method

Students must take part at least at 70% of the course. 

The final test will be a multiple-choice quiz on the course topics and a interview on the practical laboratory experience.


Final evaluation will be approved/not approved


Office hours

Monday to Friday, by appointment

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Key information

Field of research
MED/28
ECTS
4
Term
Second semester
Activity type
Mandatory
Course Length (Hours)
64
Degree Course Type
6-year single cycle Master Degree

Staff

    Teacher

  • EB
    Elisa Ballarini
  • ED
    Elisabetta Donzelli

Students' opinion

View previous A.Y. opinion

Bibliography

Find the books for this course in the Library

Enrolment methods

Manual enrolments
Self enrolment (Student)

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