Strumenti di misura di laboratorio. Principi di base e applicazioni delle principali tecniche impiegate: tecniche fotometriche, tecniche elettroforetiche, esame emocromocitometrico ed esame dell’urina, dosaggi enzimatici. Valutazione dei metodi analitici (praticabilità, attendibilità e accuratezza). Cenni sugli animali da laboratorio.

Profili d’organo:

• metabolismo epatico di glucidi, lipidi, proteine, alcool e bilirubina ed analisi biochimico-cliniche relative;
• analisi biochimico-cliniche per l’esplorazione del metabolismo glucidico;
• metabolismo del tessuto adiposo. Biochimica clinica dei lipidi e delle lipoproteine;
• metabolismo del tessuto Muscolare e Cardiaco. Marcatori di lesione miocardica;
• metabolismo del tessuto Nervoso;
• metabolismo del globulo rosso. Anemie ed emoglobinopatie;
• biochimica clinica del rene ed equilibrio idroelettrolitico; le clearances renali, la creatinina e l’urea.

Interrelazioni metaboliche tra organi e tessuti. Biochimica clinica dell’osso e metabolismo minerale. Ferro e oligoelementi.  Equilibrio acido-base e suo monitoraggio biochimico-clinico.

Tecniche di separazione dei linfociti da sangue intero. Tecniche di estrazione, purificazione, quantificazione e conservazione del DNA e dell’RNA: principi teorici e aspetti pratici. Enzimi di restrizione: aspetti teorici e applicazioni diagnostiche. Reazione di retrotrascrizione. Reazione di amplificazione degli acidi nucleici (PCR): parametri di amplificazione (denaturazione - ibridazione - estensione) e reagenti della reazione. Identificazione dei prodotti di amplificazione (elettroforesi su gel d’agarosio e sistemi di ibridazione). Tecniche di identificazione di mutazioni geniche: metodi indiretti (Southern Blot, DGGE, SSCP, PTT, CCM) e metodi diretti (RFLP, ASA, ASO). Sequenziamento di prodotti di PCR. Tecniche di determinazione di acidi nucleici virali (HCV, HBV, HIV).